СПЕКТРОФОТОМЕТРИЯ — область измерительной техники, разрабатывающая методы и приборы для определения спектральных характеристик объектов. В медико-биологических исследованиях наибольшее значение имеет анализ молекулярных и атомных спектров поглощения (см.Спектральный анализ,Спектроскопия). С помощью Спектрофотометрии определяют в различных биол. пробах содержание ферментов, гормонов, белков, витаминов, многих неорганических веществ, анализируют качественный и количественный состав мазков крови и т. д.
В основе Спектрофотометрии лежит регистрация степени ослабления монохроматического пучка света при его прохождении через вещество (закон Бугера— Ламберта — Беера: lg(I0/I) = E*c*d, где I0 и I — интенсивность света соответственно до и после его прохождения через слой вещества; с — концентрация вещества, поглощающего свет; d — толщина слоя; Е — коэффициент, зависящий от длины волны падающего света и природы вещества). Отношение интенсивности прошедшего света и интенсивности падающего (Т = 1/10) называют пропусканием. Обычно эту величину выражают в процентах от интенсивности падающего света. На практике часто используется также величина логарифма пропускания, взятая с обратным знаком (D = -lgT = E*c*d) — так наз. оптическая плотность, величина к-рой линейно связана с концентрацией вещества. Если величина с выражена в молях на литр, d — в сантиметрах, то Е называют молярным коэффициентом поглощения или молярным коэффициентом экстинкции. Он характеризует вероятность поглощения веществом электромагнитной энергии и численно равен оптической плотности раствора (D) толщиной 1 см и с концентрацией вещества, равной 1 моль на 1 л.
Закон Бугера — Ламберта — Беера справедлив лишь для плоскопараллельного пучка монохроматического света и при выполнении ряда условий. На практике часто приходится сталкиваться с отклонениями от этого закона. К числу причин отклонения могут быть отнесены физ.-хим. свойства анализируемого вещества или всего раствора (диссоциация, флюоресценция и др.)» инструментальные факторы (напр., отсутствие должной степени монохроматичности пучка света), факторы, обусловленные неоднородностью изучаемого объекта в пучке света (особенно отчетливо проявляется при микроспектрофотометрии объектов) и т. д.
Важным принципом С. является принцип аддитивности (т. е. суммации) оптических плотностей, в соответствии с к-рым величина оптической плотности смеси соединений, подчиняющихся закону Бугера — Ламберта — Беера и не вступающих в хим. взаимодействие друг с другом, равна сумме оптических плотностей этих соединений.
Количественный анализ пробы, содержащей одно вещество, включает следующие операции: 1) регистрацию полного спектра поглощения вещества (D измеряют как функцию длины волны ?), выбор аналитической длины волны (?анал); 2) приготовление 6—7 эталонных (стандартных) р-ров, охватывающих весь ожидаемый диапазон концентраций определяемого вещества в анализируемых р-рах, и измерение оптической плотности (Dст) этих растворов при ?анал. Затем строят график зависимости величины оптической плотности Dст от концентрации эталонного р-ра. Наиболее точные результаты дают измерения в диапазоне D в пределах 0,05—1,50. В случае, если построенная зависимость, т. е. Dcт = f(cст), линейна (определяемое вещество подчиняется закону Бугера — Ламберта — Беера), определение концентрации вещества осуществляют аналитически, используя формулу с = сст*(D/Dст). При несоблюдении закона Бугера — Ламберта — Беера количественный анализ проводят графическим методом (с помощью калибровочного графика). Оптическая плотность анализируемого р-ра во всех случаях измеряется относительно р-ра сравнения (прямой спектрофотометрический метод). В качестве р-ра сравнения может быть использован как чистый растворитель, так и р-р, содержащий все компоненты анализируемого р-ра за исключением определяемого вещества. В ряде случаев в качестве р-ра сравнения целесообразнее использовать р-р определяемого вещества известной концентрации (обычно более низкой, чем в анализируемых пробах). При проведении такого рода измерений говорят о дифференциальной С.
Нередко проводят регистрацию производных спектров поглощения. Производную С. применяют в основном в качественном анализе с целью выявления сильно перекрывающихся спектральных линий, при определении точного положения максимума размытых полос поглощения, идентификации малопоглощаю-щих примесей, установлении структуры органических соединений и т. д.
С. проводится в инфракрасной (ПК), УФ и видимой областях спектра. К приборам, работающим в видимой области, относятся также спектрофотометры комбинационного рассеяния (КР-спектрофотометры). С помощью С. комбинационного рассеяния изучают колебательные энергетические уровни молекул (см.Спектральный анализ,Молекула), к-рые могут быть использованы для определения числа S — S-связей в белках, числа спаренных и неспаренных оснований в нуклеиновых к-тах, относительного содержания альфа- и бета-спирализованных участков в полипептидах и др.
С. микрообъектов, или микроспектрофотометрия, — относительно самостоятельная область исследования (см.Микроспектральный анализ). Микроспектрофотометры, как и микроспектрофлюориметры, обычно предназначены для работы в видимой области спектра, реже в УФ-области и выполняются по одно лучевой схеме. Для регистрации распределения поглощающего вещества по площади микрообъекта используют различного рода сканирующие устройства: систему оптических зондов, перемещающиеся по заданной программе предметные столики, телевизионную (электронную) развертку изображения и проч. Приборы совр. конструкций снабжаются микрокомпьютерами, автоматически обрабатывающими получаемую информацию и позволяющими анализировать форму микрообъектов (напр., при автоматическом анализе мазков крови), и др. В проточных микрофлюориметрах проводится скоростной анализ флюоресцентных характеристик индивидуальных клеток крови, окрашенных соответствующими красителями. Наметилась тенденция к разработке узкоспециализированных микроспектрофотометров и микроспектрофлюориметров, предназначенных для работы в условиях клин, лабораторий.
Атомарные спектры поглощения изучают с помощью пламенных спектрофотометров (см.Фотометрия). Атомно-абсорбционные методы дают возможность определения практически всех элементов периодической системы и отличаются высокой избирательностью и чувствительностью (до 10-14 г).
Приборы для спектрального анализа комплектуются электронными устройствами обработки и управления, блоками автоматической подачи проб, самописцами, блоками цифро-печати, устройствами автоматической развертки спектра, позволяют определять в одной пробе несколько элементов.
С. широко применяется в биол. исследованиях. Она используется для количественного определения самых разнообразных биол. соединений: ферментов, витаминов, гормонов, белков и других азотистых веществ, нуклеиновых к-т, углеводов, спиртов, альдегидов, фенолов, кетонов, органических к-т, липидов, пигментов, ряда неорганических веществ (напр., натрия, калия, кальция, железа, цинка, хлора, серы) и др.
Приборы
Основными узлами спектрофотометров обычно являются: источник излучения; монохроматор, предназначенный для выделения из спектра излучения источника узких спектральных интервалов; приемник излучения; отсчетное устройство. Спектрофотометры подразделяются на однолучевые и двухлучевые, нерегистрирующие и регистрирующие. Распространенные в мед. лабораториях однолучевые нерегистрирующие спектрофотометры представляют собой достаточно простые и дешевые приборы с оптикой из оптического стекла или кварца. Использование кварцевой оптики дает возможность проводить измерения в области 200—1100 нм, охватывающей ультрафиолетовый, видимый и ближний инфракрасный участки спектра. Исследуемый образец и эталон последовательно вводят в световой пучок. Результаты сравнения пучков в величинах пропускания (в %) или оптической плотности (D) указываются на стрелочном или цифровом приборе.
Оптическая схема спектрофотометров чаще всего автоколлимационная. Источником света обычно служит водородная лампа (для работы в области спектра 220—320 нм) или лампа накаливания (для работы в области спектра 320—1100 нм). Луч света через систему зеркал попадает на диспергирующую призму, к-рая разлагает его, образуя спектр. Вращая призму, можно получать на выходе монохроматора свет волн различной длины; затем лучи проходят эталон (образец) и попадают на регистратор — светочувствительный слой фотоэлемента. Оценка производится либо с помощью калибровочного графика, либо на основе построения функциональной зависимости между величинами оптической плотности и длины волны.
К однолучевым нерегистрирующим спектрофотометрам относятся спектрофотометры СФ-4, СФ-4А, СФД-2, СФ-16, СФ-26. В частности, спектрофотометр СФ-26 имеет расширенный в ультрафиолетовой области (до 186 нм) спектральный диапазон, высокое разрешение в ультрафиолетовой области спектра и обеспечивает по сравнению с аналогами лучшую сходимость результатов измерения коэффициентов пропускания. Диапазон измерения коэффициента пропускания от 0 до 100%. Основная погрешность градуировки шкалы волн в ультрафиолетовой области 0,1 нм, в видимой области 0,5 нм, в ближней инфракрасной области 5,0 нм.
В двухлучевых регистрирующих спектрофотометрах поток от источника излучения разделяется на два пучка: основной и пучок сравнения (эталонный). В основной пучок устанавливается исследуемый образец, в пучок сравнения — эталон. При измерениях коэффициента пропускания веществ в растворе обычно используют две идентичные кюветы, одна из к-рых заполняется исследуемым образцом, а другая эталоном.
Принципиальная схема автоматического регистрирующего спектрофотометра: 1 — источник света с отражателем; 2 — диски-модуляторы; 3 — исследуемая проба; 4 — линейный оптический клин; 5 — система зеркал; 6 — приемник излучения со сканирующим монохроматором; 7 — преобразователь светового потока в электрический сигнал; 8 — усилитель электрического сигнала; 9 — сервомотор, управляющий перемещениями линейного оптического клина; 10 —аналоговый или цифровой регистратор.
Принцип действия двух лучевых приборов (рис. ) основан на нулевом методе. Приемник излучения освещается поочередно промодулированным (с помощью зеркальных секторных дисков — модуляторов) пучком света, прошедшим через исследуемый образец (или отраженный от него), и пучком сравнения. Если световые потоки в основном и эталонном каналах равны, то освещенность приемника излучения будет постоянна в любой момент времени и сигнала переменного тока на входе усилительной системы не будет. При поглощении образцом части светового потока суммарный световой поток на приемнике (стоит на выходе сканирующего монохроматора) будет изменяться с частотой модуляции, на входе усилителя появится сигнал такой же частоты. Напряжение сигнала усиливается и подается на сервомотор, приводящий в движение устройство, ослабляющее пучок сравнения, работающее до тех пор, пока не исчезнет разность световых потоков, т. е. пока не исчезнет сигнал на входе усилителя. Ослабление пучка сравнения осуществляется поворотом находящейся в пучке поляризационной призмы или введением в него компенсирующего оптического клина. Одновременно с движением компенсирующего устройства перемещается перо самописца по бланку. Автоматический поворот диспергирующего устройства (чаще всего призмы) позволяет непрерывно регистрировать эти величины.
К регистрирующим спектрофотометрам относятся приборы видимого диапазона спектра СФ-8, СФ-10, СФ-14, СФ-18 и инфракрасные спектрофотометры одно лучевые ИКС-12, ИКС-21, а также двухлучевые ИКС-14, ИКС-22, ИКС-29, ИКС-31. Инфракрасные спектрофотометры со сменными призмами позволяют измерять коэффициент пропускания веществ в области спектра 1 — 25 мкм и дальше. Они обеспечивают автоматическую запись спектра с высокой точностью и разрешающей силой. Однако при исследовании мед.-биол. объектов инфракрасные спектрофотометры применяются ограниченно из-за сильного поглощения ИК-излучения водой, являющейся основным компонентом живой ткани.
Библиография:
Асатиани B.C. Новые методы биохимической фотометрии, М., 1965; Бабушкин А. А. и др. Методы спектрального анализа, М., 1962; Берштейн И. Я. и Каминский Ю. Л. Спектрофотометрический анализ в органической химии, Л., 1975; Введение в количественную цитохимию, пер. с англ., под ред. В. Я. Бродского и Н. И. Полякова, М., 1969; 3айдель А. Н., Островская Г. В. и Островский Ю. И. Техника и практика спектроскопии, М., 1976, библиогр.; Пейсахсон И. В. Оптика спектральных приборов, Л., 1975.
Р. Р. Лидеман; И. М. Арефьев (техн.).
^
Источник: Большая Медицинская Энциклопедия (БМЭ), под редакцией Петровского Б.В., 3-е изданиеразбор матрицу судьбы